原代细胞实验步骤:
以胚胎小鼠为例
1.取材:将孕鼠拉颈椎处死,投入75%酒精浸泡数秒,提出孕鼠控掉酒精,放置于蜡盘中用大头针固定。用手术器械逐层分离皮肤和肌肉组织,打开腹腔。注意不同的解剖层次使用不同的器械。后取出双角置于无菌平皿内。
2.用Hanks液洗涤3次,剪开取出胚胎。血液和筋膜等组织。
3.用弯头剪把胚胎尽量剪碎,每个组织块小于1mm3。在操作时应尽量将平皿盖半盖住平皿以防空气中尘埃落下污染组织。再用Hanks液洗涤2~3次,自然沉淀。用吸管吸去上清液。以下可按两种方法进行,即消化法和组织块培养法。
4.若使用消化法,则将组织块放人三角烧瓶内加入10~30mL0.125%胰蛋白酶,37℃磁力搅拌消化20多min。然后加入少量血清终止消化。用几层无菌纱布过滤。取过滤液,800r/min离心5~10min收集细胞。弃上清,加入带有双抗的培养基,放入培养瓶中培养。
注:细胞分离的方法各实验室不同,所采用的消化酶也不相同(如胶原酶,透明质酶等)。
5.若进行组织块培养,则不做步骤4,加入几滴血清于组织块中,再用弯头吸管将组织块悬液吸起。在一小培养瓶中逐个铺展开,注意将瓶底涂抹均匀。将瓶子翻转倒置后在37℃培养箱内放置2-3h。待组织块微干与瓶壁粘牢后再轻轻将瓶子翻转过来,从边角加入4~5mL培养基,使细胞接触到培养基,放培养箱内继续进行培养。
本产品于科学研究实验使用、不得用于其它。
组织来源 |
关节组织 |
货号 |
P-X1424 |
产品规格 |
5×105 |
生长特性 |
贴壁 |
产品类别 |
人原代细胞 |
细胞形态 |
成纤维样细胞 |
细胞详述:

滑膜是关节囊的内层,淡红色,平滑闪光,薄而柔润,由疏松结缔组织组成。关节腔内的所有结构,除关节软骨、半月软骨板以外 ,即便是通过关节腔的肌腱、韧带等均全部为滑膜所包裹。
关节软骨一旦损伤将很难修复,运用自体软骨细胞移植技术软骨损伤,效果较好,但由于细胞来源不足以及取材造成的取材部位发生病变等因素,使其应用受到限制。
间充质干细胞( MSCs)具有高度增殖和多向分化潜能的特性。其中,滑膜中间充质干细胞的比例较高,少量的标本就可获得足量的滑膜MSCs。此外,由于其具有比骨髓、脂肪等来源的MSCs更好的成软骨、成骨、成脂肪等多分化能力和更强的集落形成能力等吸引了许多研究者对其进行深入研究。

细胞特性:

1)细胞来源于人正常关节组织。
2)细胞鉴定:CD105荧光染色为阳性。
3)经鉴定细胞纯度高于90%。
4)不含有 HIV-1、 HBV、HCV、支原体、、酵母和。
5)细胞生长方式:成纤维样细胞,贴壁培养。
推荐培养基:
我们推荐使用 DELF原代间充质干细胞培养体系 作为体外培养的培养基。
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注意事项:
1.收到细胞后,若发现干冰已挥发干净、冻存管瓶盖脱落、破损及细胞有污染,请立即与我们联系。
2.收到细胞先不开瓶盖,瓶身擦拭酒精后放在培养箱静置2-4小时(视细胞密度而定)稳定细胞状态。接着在倒置显微镜下观察细胞生长情况,并对细胞进行不同倍数拍照(建议收细胞时就整体外观拍一张照片,观察培养基的颜色和是否有漏液情况,随后在显微镜下拍下细胞状态,100*,200*各一张),观察记录细胞在运输过程中是否有污染情况。作为我方进行销售依据。3.由于细胞状态受环境、操作和运输等多方面因素影响,故本公司只保证客户收到细胞后一周内的细胞状态,故客户需要售后时需出示收到细胞的时间证明及客户提供收货时间和发现问题后客服人员沟通的时间证明,期间间隔时间不能大于7天。
4.所有动物细胞均视为有潜在的生物危害性,必须在二级生物台内操作,并请注意防护,所有废液及接触过此细胞的器皿需要后方能丢弃。
5.客户在细胞培养过程中,有任何问题可联系我们在线客服。